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专题蛋白质技术的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳实验
点击次数:39 发布时间:2019-03-01

[原理]
蛋白质在十二烷基硫酸钠(SDS)和巯基乙醇的作用下,分子中的二硫键还原,氢键等打开,形成按1.4gSDS/1g蛋白质比例的SDS-蛋白质多肽复合物,该复合物带负电,故可在聚丙烯酰胺凝胶电泳中向正极迁移,且主要由于凝胶的分子筛作用,迁移速率与蛋白质的分子量大小有关,因此可以浓缩和分离蛋白质多肽。

聚丙烯酰凝胶电泳分离蛋白质多数采用一种不连续的缓冲系统,主要分为较低浓度的成层胶和较高浓度的分离胶,配制凝胶的缓冲液,其pH值和离子强度也相应不同,故电泳时,样品中的SDS-多肽复合物沿移动的界面移动,在分离胶表面形成了一个极薄的层面,大大浓缩了样品的体积,即SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳的浓缩效应。

[试剂]
1、30%凝胶贮备液:称取29g 丙烯酰胺(Acr)和1g 甲叉-双丙烯酰胺(Bis),加蒸馏水至100ml,滤纸过滤贮存。
2、10% SDS:称取SDS 10g 加蒸馏水至100ml。
3、10%过硫酸胺(AP)
4、N,N,N’,N’四甲基乙二胺(TEMED)
5、5×电泳缓冲液:于900ml蒸馏水中分别加入15.1g Tris、94g甘氨酸、5g SDS,混匀后加蒸馏水至1 000ml。
6、1.5mol/L Tris-HCl(pH8.8)和1.0mol/L Tris-HCl(pH6.8)
7、电泳加样缓冲液
10mmol/LpH6.8 Tris
200mmol/LDTT
4%SDS
0.2% 溴酚兰
20% 甘油
8.正丁醇

[器材]
1、移液器
2、移液管
3、烧杯
4、垂直电泳槽
5、电泳仪

[操作步骤]
1.配制分离胶浓度8%、体积15ml
H2O 6.9ml
30%凝胶贮备液 4.0ml
1.5mol/L Tris-HCl(pH8.8) 3.8ml
10%SDS 0.15ml
10%过硫酸胺 0.15ml
TEMED 0.01ml
2.一旦加入TEMED,混匀后立即小心地将分离胶注入准备好的玻璃板间隙中,为成层胶留有足够空间。用毛细管轻轻在其顶层加入几毫升正丁醇,以阻止空气中的氧气对凝胶聚合的抑制作用。
3.聚合完成之后,倒掉覆盖液体,用去离子水洗凝胶上部数次,尽可能用吸水纸吸干顶端的残存液体。
4.配制5%成层胶5ml,插入梳子,小心避免混入气泡,垂直放置室温下。

H2O 3.4ml
30%凝胶贮备液 0.83ml
1.0mol/Ltris-HCl(pH6.8) 0.63ml
10%SDS 0.05ml
10%过硫酸胺 0.05ml
TEMED 0.01ml
5.在成层胶聚合时,将样品与加样缓冲液混匀,100℃加热3min。
6.成层胶聚合完成后,用去离子水冲洗梳孔以除去未聚合的丙烯酰胺,将凝胶放入电泳槽上。
7.加样
8.电泳:开始时电压为8V/cm凝胶,染料进入分离胶后,将电压增加到15V/cm凝胶,继续电泳直到染料抵达分离胶底部,断开电源。
9.取下凝胶,固定、染色或进行Western blot分析。

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